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MDT-MR01N-1 微生物RNA提取试剂盒(柱式法)-研磨管

微生物RNA提取试剂盒(柱式法)【预期用途】微生物RNA提取试剂盒(柱式法)用于从革兰氏阳性细菌或真菌等含细胞壁的生物体中分离纯化出高质量、高浓度的RNA。本产...


商品详情

补充信息

【预期用途】

微生物RNA提取试剂盒(柱式法)用于从革兰氏阴性细菌、革兰氏阳性细菌或真菌等生物体中分离纯化出的总RNA(含病毒和噬菌体RNA)。

 

【检验原理】

在高速振荡情况下,玻璃珠破坏微生物细胞壁,细胞裂解液裂解细胞释放核酸,并与核酸保护剂一起保护RNA不被核酸酶水解。中和缓冲液清除DNA,硅胶膜高效吸附RNA,洗涤吸附柱,去除蛋白、盐等杂质。在洗脱液作用下,硅胶膜释放吸附的RNA从而获得高质量的RNA

 

【试剂盒组成、贮藏及有效期】

产品编号

组成成分

50T

100T

200T

MDT-MR01N-1

消化液

2mL×1

4mL×1

8mL×1

研磨管

50

100

200

细胞裂解液C

25mL×1

50mL×1

100mL×1

核酸保护剂

1mL×1

2mL×1

4mL×1

中和缓冲液R

7.5mL×1

15mL×1

30mL×1

RAW1缓冲液

12mL×1

24mL×1

48mL×1

吸附柱(含收集管)

50

100

200

洗脱液A

5mL×1

10mL×1

20mL×1

使用说明书

1

1

1

核酸保护剂和消化液:常温(10-30℃)运输,2-8℃保存;

其他成分:常温(10-30℃)运输保存。有效期1年。

【注意事项】Ø使用前务必认真阅读以下注意事项

1.    使用前,细胞裂解液C如有沉淀则37℃以上孵育至液体澄清(孵育约5-10分钟)。

2.    使用前检查中和缓冲液R是否出现混浊或结晶,如有混浊或结晶,可于水浴中孵育至澄清。

3.    提前配制RAW1RAW1中乙醇含量低于60%会影响提取效果。

4.    提前配制80%乙醇水溶液,乙醇水溶液中乙醇含量低于80%会影响提取效果。

5.    本试剂盒在有效期内不同批号试剂可以互换。

6.    虽然本产品无氯仿、苯等OSHA规定的危险物品,但操作时最好做好必要的防护措施,戴口罩手套,并且在通风的生物安全柜中进行。

7.    按当地法律法规处理生物样本和废弃物。

 

【样本要求】

新鲜的痰液、脓液、宫颈粘液、粪便、尿液、胸腹水、肺泡灌洗液、脑脊液、组织渗出液、各种拭子(宫颈刷)、培养物等。

 

【适用范围】

2.0×109个细菌;≦5.0×107个真菌。


微生物RNA提取试剂盒(研磨法)

一、产品亮点

1. 破壁效果好速度快:对革兰氏阳性菌和真菌的破壁速度快(10分钟内即可完成破壁)、效果好,克服了溶菌/溶壁酶法操作时间长,并且只对部分细菌的细胞壁有效的缺点。

2. RNA完整:迈德泰克研磨法提取的革兰氏阳性菌和真菌的RNA完整,克服了酶法RNA容易降解的缺点。

3. 操作简单快速:独创的快速方法,完成1次提取只需30分钟。

4. 提取环境安全:提取过程无苯酚、氯仿以及OSHA规定的有毒物质,提取环境相对安全。

二、适用范围:2.0×109个细菌;5.0×107个真菌

三、实验数据

1 迈德泰克研磨法提取革兰氏阳性菌和真菌RNA与溶菌/溶壁酶法的比较

微生物名称

方法

260/280

260/230

浓度(ng/μL

洗脱体积(μL

粪肠球菌

研磨法

2.13

2.23

183.0

50

溶菌酶法

2.23

2.44

165.0

表皮葡萄球菌

研磨法

2.20

2.36

95.7

50

溶菌酶法

1.99

1.57

17.2

热带假丝酵母菌

研磨法

2.18

2.16

65.2

50

溶壁酶法

1.93

1.39

36.3

                                              微R.png

迈德泰克微生物RNA提取试剂盒(研磨法)提取的不同微生物RNA电泳图。Lane1:研磨法提取的粪肠球菌RNA,上样量1.5μLLane2: 溶菌酶法提取的粪肠球菌RNA,上样量1.5μLLane3: 研磨法提取的表皮葡萄球菌RNA,上样量3μLLane4: 溶菌酶法提取的表皮葡萄球菌RNA,上样量10μLLane5: 研磨法提取的热带假丝酵母菌RNA,上样量5μLLane6: 溶壁酶法提取的热带假丝酵母菌RNA,上样量5μL


微生物RNA(柱式法)提取常见问题

RNA提取常见问题

原因

解决方案

吸附柱堵塞

1.样本使用量过多

减少样本使用量,使用量不超过2.0×109个细菌和5.0×107个真菌。

未提取到RNA 或产量低

1.样本使用量过少

增加样本使用量,但使用量不超过2.0×109个细菌和5.0×107个真菌。

2. 样本未及时保存或保存不当

样本保存温度不当或保存时间过长,内源性RNase导致RNA降解。采用新鲜、液氮保存或保存液保存的样本。

3.细胞壁破坏不充分

研磨时细胞壁破坏不充分,增加研磨速度和时间。

4.细胞裂解液和中和缓冲液使用不当

细菌裂解液和中和缓冲液在温度较低时可能出现浑浊或结晶,应置于37℃以上孵育直至完全溶解;按说明书正确加入细胞裂解液和中和缓冲液。

5.异丙醇使用量过少或过多

按说明书准确加入异丙醇。

6. RAW1中乙醇添加比例不当

使用无水乙醇配制RAW1,使乙醇含量达60%

7. 80%乙醇水溶液配制不当

使用无水乙醇配制80%乙醇水溶液,乙醇含量达80%

8.洗脱不当

洗脱液加至膜中央,适当减少洗脱体积,可65°C 预热、延长室温放置时间或者进行二次洗脱。

RNA降解

1.样本未及时保存或保存不当

采用新鲜、液氮保存或组织保存液(RNA Later)保存的样本。

2.样本反复冻融

避免样本反复冻融,分装保存。

3.电泳污染和环境污染

1.电泳前确保电泳槽、制胶板和电泳液无RNase污染,如有污染,使用洗洁精充分清洗电泳槽和制胶板,再用3%双氧水浸泡20 min,然后用RNase-free ddH2O进行冲洗;使用RNase-free ddH2O配制电泳缓冲液。

2.使用相对新鲜(2-8℃密闭保存不超过3天)的琼脂糖凝胶进行电泳。

3. 配制琼脂糖凝胶时,凝胶室温凝固时间在30-60分钟之间。

纯度低

1.盐离子残留

加入RAW1后闭盖静置30秒;避免RAW1接触吸附柱上下口;使用80%乙醇水溶液再洗涤1次。

2.乙醇残留

最后一次洗涤后,吸附柱闭盖12,000×g再离心3分钟。

gDNA污染

1.样本使用量过高

不同样本DNA含量相差大,减少样本使用量,使用量不超过2.0×109个细菌和5.0×107个真菌。

2.裂解液和中和缓冲液使用不当

按说明书正确加入裂解液和中和缓冲液。





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