MDT-Pu03-2-RNA纯化试剂盒(中和柱式法)
【预期用途】
RNA纯化试剂盒用于从核酸混合物中纯化RNA,RNA片段总回收率大于80%。
【检验原理】
中和缓冲液清除DNA,RNA被吸附柱内的硅胶膜高效吸附,洗涤吸附柱,去除蛋白、盐等杂质。在洗脱液低盐高pH值的情况下,硅胶膜释放吸附的RNA从而获得高质量的RNA。
【试剂盒组成、贮藏及有效期】
产品编号 | 组成成分 | 50T | 100T | 200T |
MDT-Pu03-2 | 中和缓冲液M | 7.5mL×1瓶 | 15mL×1瓶 | 30mL×1瓶 |
RAW1缓冲液 | 12mL×1瓶 | 24mL×1瓶 | 48mL×1瓶 | |
吸附柱(含收集管) | 50支 | 100支 | 200支 | |
洗脱液A | 20mL×1瓶 | 40mL×1瓶 | 80mL×1瓶 | |
使用说明书 | 1份 | 1份 | 1份 |
所有成分:常温(10-30℃)运输保存,有效期1年。
【注意事项】使用前务必认真阅读以下注意事项
1.提前配制RAW1,RAW1中乙醇含量低于60%会影响提取效果。
2.提前配制80%乙醇水溶液,乙醇水溶液中乙醇含量低于80%会影响洗涤效果。
3.本试剂盒在有效期内不同批号试剂可以互换。
4.虽然本产品无氯仿、苯等OSHA规定的危险物品,但操作时最好做好必要的防护措施,带口罩手套,并且在通风的生物安全柜中进行。
5.按当地法律法规处理生物样本和废弃物。
【样本要求】
≦100μL的核酸混合物。
【自备器械和试剂】
小型高速离心机(最大离心力≥12,000×g)、1.5mL离心管、无水乙醇和异丙醇等。
l RAW1配制:RAW1缓冲液使用前按照瓶身标签说明加入相应量的无水乙醇,使乙醇含量为60%,混匀后密封常温保存。
l 80%乙醇水溶液配制:1份水加入4份无水乙醇,配制成80%乙醇水溶液,混匀后密封常温保存。
【标准操作步骤】
1.在1.5mL离心管中加入≦100μL的核酸产物和相应体积的洗脱液A,使总体积达到400μL,混匀。
2.加入150µL的中和缓冲液M和250µL异丙醇,充分吹打混匀。
3.将吸附柱放入收集管中,转移所有液体至吸附柱。闭盖12,000×g离心1分钟。吸弃废液,将吸附柱重新放入收集管中。
4.开盖,在吸附柱中加入600μL RAW1,闭盖12,000×g离心20秒。吸弃废液,将吸附柱重新放入收集管中。
Ø加入RAW1时,避免RAW1接触吸附柱的管口。
5.开盖,在吸附柱中加入600μL 80%乙醇水溶液,闭盖12,000×g离心20秒。吸弃废液,将吸附柱重新放入收集管中。
6.开盖,在吸附柱中加入600μL 80%乙醇水溶液,闭盖12,000×g离心20秒。取出吸附柱,丢弃收集管。
7.闭盖12,000×g离心3分钟。取出吸附柱,丢弃离心管。
8.将吸附柱放入新的1.5mL离心管中,加入50µL洗脱液A至吸附柱中心。闭盖室温静置1分钟,12,000×g离心1分钟,收集洗脱液,备用。
Ø洗脱液A的使用量可以根据需要调整,但用量不得低于30µL。
Ø洗脱液的使用量太少会影响提取效果。
常见问题 | 原因 | 解决方案 |
未提取到RNA或产量低 | 1.样本使用量过少 | 增加样本使用量。 |
2.样本保存不当 | 采用新鲜、液氮保存的样本。 | |
3.裂解液和中和缓冲液使用不当 | 按说明书正确加入裂解液和中和缓冲液。 | |
4.异丙醇使用量过少或过多 | 按说明书准确加入异丙醇。 | |
5. RAW1中乙醇添加比例不当 | 使用无水乙醇配制RAW1,使乙醇含量达60%。 | |
6. 80%乙醇水溶液配制不当 | 使用无水乙醇配制80%乙醇水溶液,乙醇含量达80%。 | |
7.洗脱不当 | 洗脱液加至膜中央,适当减少洗脱体积,可65°C预热洗脱液、延长室温静置时间或者进行二次洗脱。 | |
RNA降解 | 1.样本未及时保存或保存不当 | 采用新鲜、液氮保存的样本。 |
2.样本反复冻融 | 避免样本反复冻融,分装保存。 | |
3.电泳污染和环境污染 | 电泳前确保电泳槽、制胶板和电泳液无RNase污染,如有污染,使用洗洁精充分清洗电泳槽和制胶板,再用3%双氧水浸泡20 min,然后用RNase-free ddH2O进行冲洗;使用RNase-free ddH2O配制电泳缓冲液。 | |
纯度低 | 1.盐离子残留 | 避免RAW1接触吸附柱上下口;使用80%乙醇水溶液再洗涤1次。 |
2.乙醇残留 | 最后一次洗涤后,吸附柱闭盖12,000×g再离心3分钟。 |



