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MDT-Pu03-2-RNA纯化试剂盒(中和柱式法)

【预期用途】用于小提中量质粒的快速提取。【检验原理】 裂解含质粒的细菌,在试剂高盐低pH的环境下,吸附柱内的硅胶膜高效吸附分离的质粒DNA;洗涤吸附柱,去除蛋白...


商品详情

补充信息

【预期用途】

RNA纯化试剂盒用于从核酸混合物中纯化RNA,RNA片段总回收率大于80%。

 

【检验原理】

中和缓冲液清除DNA,RNA被吸附柱内的硅胶膜高效吸附,洗涤吸附柱,去除蛋白、盐等杂质。在洗脱液低盐高pH值的情况下,硅胶膜释放吸附的RNA从而获得高质量的RNA。

 

【试剂盒组成、贮藏及有效期】

产品编号

组成成分

50T

100T

200T

MDT-Pu03-2

中和缓冲液M

7.5mL×1

15mL×1

30mL×1

RAW1缓冲液

12mL×1

24mL×1

48mL×1

吸附柱(含收集管)

50

100

200

洗脱液A

20mL×1

40mL×1

80mL×1

使用说明书

1

1

1

所有成分:常温(10-30℃)运输保存,有效期1年。


 

【注意事项】使用前务必认真阅读以下注意事项

1.提前配制RAW1,RAW1中乙醇含量低于60%会影响提取效果。

2.提前配制80%乙醇水溶液,乙醇水溶液中乙醇含量低于80%会影响洗涤效果。

3.本试剂盒在有效期内不同批号试剂可以互换。

4.虽然本产品无氯仿、苯等OSHA规定的危险物品,但操作时最好做好必要的防护措施,带口罩手套,并且在通风的生物安全柜中进行。

5.按当地法律法规处理生物样本和废弃物。

 

【样本要求】

≦100μL的核酸混合物。

 

自备器械和试剂】

型高速离心机(最大离心力12,000×g)、1.5mL离心管、无水乙醇和异丙醇

l  RAW1配制:RAW1缓冲液使用前按照瓶身标签说明加入相应量的无水乙醇,使乙醇含量为60%,混匀后密封常温保存。

l  80%乙醇水溶液配制:1份水加入4份无水乙醇,配制成80%乙醇水溶液,混匀后密封常温保存

 

【标准操作步骤】

1在1.5mL离心管中加入≦100μL的核酸产物和相应体积的洗脱液A,使总体积达到400μL,混匀。


2.加入150µL的中和缓冲液M和250µL异丙醇,充分吹打混匀。


3.将吸附柱放入收集管中,转移所有液体至吸附柱。闭盖12,000×g离心1分钟。吸弃废液,将吸附柱重新放入收集管中。


4.开盖,在吸附柱中加入600μL RAW1,闭盖12,000×g离心20秒。吸弃废液,将吸附柱重新放入收集管中。


Ø加入RAW1时,避免RAW1接触吸附柱的管口。

 

5.开盖,在吸附柱中加入600μL 80%乙醇水溶液,闭盖12,000×g离心20秒。吸弃废液,将吸附柱重新放入收集管中。


6.开盖,在吸附柱中加入600μL 80%乙醇水溶液,闭盖12,000×g离心20秒。取出吸附柱,丢弃收集管。


7.闭盖12,000×g离心3分钟。取出吸附柱,丢弃离心管。


8.将吸附柱放入新的1.5mL离心管中,加入50µL洗脱液A至吸附柱中心。闭盖室温静置1分钟,12,000×g离心1分钟,收集洗脱液,备用。


Ø洗脱液A的使用量可以根据需要调整,但用量不得低于30µL。

Ø洗脱液的使用量太少会影响提取效果。


常见问题

原因

解决方案

未提取到RNA或产量低

1.样本使用量过少

增加样本使用量。

2.样本保存不当

采用新鲜、液氮保存的样本。

3.裂解液和中和缓冲液使用不当

按说明书正确加入裂解液和中和缓冲液。

4.异丙醇使用量过少或过多

按说明书准确加入异丙醇。

5. RAW1中乙醇添加比例不当

使用无水乙醇配制RAW1,使乙醇含量达60%。

6. 80%乙醇水溶液配制不当

使用无水乙醇配制80%乙醇水溶液,乙醇含量达80%。

7.洗脱不当

洗脱液加至膜中央,适当减少洗脱体积,可65°C预热洗脱液、延长室温静置时间或者进行二次洗脱。

RNA降解

1.样本未及时保存或保存不当

采用新鲜、液氮保存的样本。

2.样本反复冻融

避免样本反复冻融,分装保存。

3.电泳污染和环境污染

电泳前确保电泳槽、制胶板和电泳液无RNase污染,如有污染,使用洗洁精充分清洗电泳槽和制胶板,再用3%双氧水浸泡20 min,然后用RNase-free ddH2O进行冲洗;使用RNase-free ddH2O配制电泳缓冲液。

纯度低

1.盐离子残留

避免RAW1接触吸附柱上下口;使用80%乙醇水溶液再洗涤1次。

2.乙醇残留

最后一次洗涤后,吸附柱闭盖12,000×g再离心3分钟。


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