MDT-PuP02-C-无内毒素质粒中量提取试剂盒(沉淀法)
【预期用途】
用于中量高纯度无内毒素质粒的提取。
【检验原理】
裂解含质粒的细菌,RNA清除剂清除RNA,基因组DNA被中和液沉淀而去除;内毒素被内毒素过滤柱吸附而去除;质粒被异丙醇沉淀,洗涤后质粒DNA用洗脱液溶解。
【试剂盒组成、贮藏及有效期】
产品编号 | 组成成分 | 10T | 20T |
MDT-PuP02-C | 细菌悬浮液 | 40mL×1瓶 | 80mL×1瓶 |
RNA清除剂 | 1mL×1支 | 2mL×1支 | |
细菌裂解液 | 40mL×1瓶 | 80mL×1瓶 | |
中和缓冲液R | 40mL×1瓶 | 80mL×1瓶 | |
内毒素过滤柱 | 10支 | 20支 | |
洗脱液B | 2mL×1瓶 | 5mL×1瓶 | |
使用说明书 | 1份 | 1份 |
RNA清除剂:常温(10-30℃)运输,2-8℃保存;
其他试剂:常温(10-30℃)运输保存。有效期1年。
细菌悬浮液:初次使用前加入全部RNA清除剂。短期使用2-8℃保存,长期使用-20℃保存,有效期1年。
【注意事项】使用前务必认真阅读以下注意事项
1. 使用前,细菌裂解液37℃以上孵育至液体澄清(孵育需要5-10分钟)。
2. 使用前检查中和缓冲液R是否出现混浊或结晶,如有混浊或结晶,可于水浴中孵育至澄清。
3. 细菌悬浮液初次使用前加入全部RNA清除剂。
4. 提前配制70%乙醇水溶液,乙醇水溶液中乙醇含量低于70%会影响洗涤效果。
5. 本试剂盒在有效期内不同批号试剂可以互换。
6. 虽然本产品无氯仿、苯等OSHA规定的危险物品,但操作时最好做好必要的防护措施,戴口罩手套,并且在通风的生物安全柜中进行。
7. 按当地法律法规处理生物样本和废弃物。
【样本要求】
含目的质粒的液体培养12-16h的菌液。
【适用范围】
高拷贝型质粒:25-50mL菌液;低拷贝型质粒:100mL菌液。
【提取得率】
质粒类型 | 质粒名称 | 菌液量 | 得率 |
低拷贝 | pBR322,pACYC,pWE15,pSC101等 | 100mL | 100-350μg |
高拷贝 | pTZ,pUC,pBS等 | 25-50mL | 300-800μg |
【自备器械和试剂】
大型高速离心机(最大离心力≥8,000rpm)、50mL离心管、无水乙醇和异丙醇等。
l 70%乙醇水溶液配制:3份水加入7份无水乙醇,配制成70%乙醇水溶液,混匀后密封常温保存。
l 试剂盒初次使用前,将RNA清除剂全部加入细菌悬浮液,混匀并做好标记后按规定保存。
l 每次使用前检查细菌裂解液和中和缓冲液R是否有沉淀或结晶,如有沉淀或结晶,请于37°C以上孵育至液体澄清(孵育需要5-10分钟)。
【标准操作步骤】
1.取25-50mL(低拷贝推荐用100mL)过夜培养的菌液加入离心管中,10,000rpm离心1分钟。尽量吸除上清。多次离心的菌体沉淀可以合并至同一的50mL离心管中。
Ø提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10kb的大质粒,应加大菌体使用量。
Ø菌液量以能够被细菌裂解液充分裂解为佳,菌液过多会因裂解不充分从而降低质粒的提取效率。
2.向含菌体沉淀的50mL离心管中加入4mL 细菌悬浮液,充分悬浮细菌沉淀。
Ø如有未充分混匀的菌块,会影响细菌裂解,导致质粒提取量和纯度偏低。
3.加入4mL细菌裂解液,温和的上下翻转6-8次,使液体充分混匀。室温放置4分钟,使菌体充分裂解。
Ø混合时不要剧烈吹打,以免打断基因组DNA,造成提取的质粒中混有基因组DNA片段。
Ø室温放置时间不应超过5分钟,以免质粒受到破坏。
Ø此时菌液应变得清亮粘稠,如果未清亮,可能由于菌体过多,裂解不彻底,应减少菌体量或按相同比例同时增加细菌悬浮液和细菌裂解液的使用量。
Ø细菌裂解液在温度较低时容易产生沉淀,使用前充分孵育确保沉淀完全溶解。
4.向50mL离心管中加入4mL中和缓冲液R,立即温和地上下翻转6-8次,使液体充分混匀。室温(25-30℃)放置12分钟后,10,000rpm离心10分钟。此时在离心管底部形成白色沉淀。
Ø中和缓冲液R加入后应立即轻轻颠倒混匀,避免产生局部沉淀。
Ø室温太低易导致RNA清除不完全。
5.将步骤4产生的全部上清加入到内毒素过滤柱中,缓缓推动推柄将上清推入新的50mL离心管中。弃去内毒素过滤柱,保留离心管中的滤液
Ø尽量不要吸出沉淀。
6. 向离心管中的滤液加入0.7倍滤液体积的异丙醇,轻轻颠倒50次。
7.10,000rpm离心5分钟。弃上清,保留DNA沉淀。
Ø弃上清时务必小心,确保DNA沉淀不丢失。
8. 加入 1.5mL 70%乙醇,充分悬浮沉淀。转移沉淀至1.5mL 离心管中。
9. 10,000rpm离心1分钟。弃上清,保留DNA沉淀。
Ø弃上清时务必小心,确保DNA沉淀不丢失。
10.50℃,开盖干燥5分钟。干燥过程中再次吸弃残留液体。
11. 加入用100μL洗脱液B,轻轻吹打充分溶解质粒。
Ø洗脱液B的使用量可以根据需要调整。
Ø洗脱液B可以根据下游实验需要更换成TE或DEPC水。
【质粒提取(柱式法)常见问题解答】
1.未提出质粒或质粒得率较低
⑴大肠杆菌老化:挑选平板培养72小时以内的单菌落重新进行液体培养。
⑵质粒拷贝数低:使用低拷贝数的载体时,增加菌体用量的同时需要增加相应试剂的使用量。
⑶菌体中无质粒:有些质粒频繁转接容易造成质粒丟失,因此每次接种时应接种单菌落;另外,使用的抗生素类型和浓度必须正确,否则易导致无质粒菌体优势生长。
⑷裂解不充分:菌体量使用过多易导致菌体裂解不充分,可减少菌体用量或增加相应试剂的用量。
⑸溶液失效:细菌裂解液长期暴露在空气中容易失效,请每次使用完后,立即盖紧瓶塞,以免失效,造成碱裂解不充分。
⑹溶液使用不当:细菌裂解液和中和缓冲液在温度较低时可能出现浑浊或结晶,应置于37℃以上孵育直至完全溶解。
⑺乙醇残留:70%漂洗后尽量去除残留液体并应适当干燥。
⑻质粒溶解不完全:溶解质粒时,适当加温(37-50℃)或延长洗脱时间,可提高质粒特别是大质粒的溶解效率。
2.质粒纯度不高
⑴蛋白残留:菌体使用量过多时,减少菌体用量或增加试剂使用量。经细菌悬浮液,细菌裂解液和中和缓冲液处理,离心后的上清应为澄清的液体。离心后的上清中如果还有悬浮物,可颠倒数次后再次离心,使蛋白完全沉淀后再取上清至吸附柱中。
⑵RNA残留:RNA清除剂处理不彻底,减少菌体用量或加入中和缓冲液后室温再延长放置时间5-10分钟,或增加RNA清除剂的使用量。如果细菌悬浮液已保存6个月以上,请在细菌悬浮液中添加新鲜的RNA清除剂。
⑶混有基因组DNA:加入细菌裂解液后应温和混匀,如果剧烈振荡,可能把基因组DNA打断从而混杂在质粒中。如果加入细菌裂解液后过于粘稠,无法温和混匀,请减少菌体用量。细菌培养时间过长会导致细胞内DNA的降解,培养时间不要超过16小时。
⑷质粒的二聚体和多聚体形式:质粒复制过程中形成的,与宿主菌相关,电泳可检测出多条条带,单酶切处理后可变成单一条带。



